Laboratóriumi módszerek a ku-láz vizsgálatára
A kutatás laboratóriumi módszerei nagy segítséget jelentenek a betegség felismerésében. A szerológiai diagnózist a Burnett rickettsia antigénjével végezzük az agglutinációs reakcióban és a komplementkötési reakcióban.
Az agglutinációs reakció gyakran pozitív az 1. pedál végére és szinte mindig a betegség 2. hetének végére. A komplementkötési reakció pozitívvá válik a betegség 5.-9. napján, vagy némileg később. Mindkét reakció a legjelentősebb a betegség 3-5. Hetében, akkor a titerük csökken, o és tovább marad 6-12 hónapig, néha még hosszabb ideig. Az antibiotikumokkal kezelt betegeknél az antitestek megjelennek, és a vér később és alacsonyabb titerben jelenik meg.
A serodiagnosztika módszere meglehetősen egyszerű és széles körben elérhető. A legmeghatározóbb a komplementkötési reakció. Természetesen a titer 1:80. Alacsonyabb kezdeti címeken figyelembe kell venni növekedésük dinamikáját.
Számos esetben azonban a Ku-láz feltétlen klinikai és epidemiológiai diagnózisa feltételezi, hogy a komplementkötési reakció titere továbbra is alacsony a betegség egészében, és néha még negatívnak is tűnik (az esetek legfeljebb 5% -a).
Általánosan elfogadott, hogy a szerológiai reakciókat a Q-láz (ellentétben más Rickettsia betegségek) negatívok minden típusú Proteus (Weil-Felix reakció) és más Rickettsia-kórokozók.
A komplementkötési reakció antigénjét száraz formában szabadítják fel, és a reakció előkészítése előtt fiziológiás sóoldatban hígítjuk 50 ml-es rickettsias / ml koncentrációban.
A laboratóriumi távolságtól függően az anyag szállítása száraz papírsavas savócukor formájában is lehetséges. Intradermális allergiás vizsgálat esetén az allergiát az alkar belső felületére 0,1 ml dózisban injektálják 1:10 - 1: 5 hígításban. A reakció pozitívnak tekinthető, ha 6-8 óra után hiperémia, majd duzzanat keletkezik. 20 és 24 óra elteltével a hyperemia közepén kis infiltráció lép fel.
A Ku-láz bakteriológiai diagnózisa a legmegbízhatóbb módszer, azonban az ilyen vizsgálatok speciálisan felszerelt laboratóriumi és képzett személyzetet igényelnek.
A kórokozó izolálására a páciens vérét, cerebrospinalis folyadékát, vizeletét és köpetét (pulmonalis formájával) lehet használni; a betegség közepette. Az 5 ml-es térfogatú anyagot intraperitoneálisan 300-400 g tömegű tengerimalacra adják be, amelyet naponta rektális hőmérsékleten mérnek. Ha a hőmérséklet fölé emelkedik 39,5 °, majd elő további részeket egészséges tengerimalacok 10% -os szuszpenzió, a máj és a lép beteg tengerimalac, mivel bizonyos esetekben az első passzálások a kórokozó nem mutatható.
A kórokozó azonosítjuk kimutatására Rickettsia festett kenetek szöveteiből fertőzött állatok, a próbáknak az eredményeit a kereszt-immunitás, a jelenlétét a szérumban a lábadozó tengerimalac komplement-specifikus antitestek.
A laboratóriumi diagnózis gyorsabb módszere a 0,25 ml 10% -os vér vagy lép szuszpenzió bevezetése az egészséges tengerimalac heréhez. Ebben az esetben az első szakaszban rickettsia is kimutatható a fertőzött herékben a betegség hetedik napján.
Az izolált törzsek termesztése 7 napos csirkeembriókban is lehetséges, amelyek a tengerimalac lépének 0,5 ml-es 10% -os szuszpenziójával fertőzöttek.
Amikor anyagot küld a laboratóriumba, a kórokozó megőrzéséhez ajánlott vérrögképződést készíteni kémiailag tiszta glicerinben. Az anyag steril körülmények között kerül felhasználásra.
Ossza meg a kapcsolatot a barátaival